PRÁCTICA: API 20 E Y API 10 S (16/01/18)
API 20E
La batería de pruebas API20E es un sistema de identificación rápida para bacterias de la familia Enterobacteriaceae y otras bacterias Gram (-). Básicamente consta de 21 test bioquímicos estandarizados y miniaturizados y una base de datos. Este sistema presenta las ventajas de ser rápido, eficaz y de permitir realizar numerosas pruebas a la vez. Cada tira de API 20E contiene 20 microtubos o pocillos con distintos sustratos deshidratados. Cada tubo es una prueba bioquímica distinta.
La lectura de las reacciones se hace mediante comparación con una tabla de lectura donde se indica si los microorganismos deben considerarse positivos o negativos para cada reacción según el color aparecido.
- INÓCULO BACTERIANO
E. Coli
- MATERIAL
- Pipeta Pasteur
- Agua destilada
- Parafina
- Asas de siembra estériles
- Gradilla para ampollas
- Suero salino
- Tijeras
- TDA
- VP (VP1 Y VP2)
- NIT1 Y NIT2
- Reactivo de Kovac
- PROCEDIMIENTO
2. Realizamos la cámara húmeda poniendo unas gotas de agua destilada en los alvéolos del soporte
3. Llenamos con la suspensión de bacterias los tubos (no la cúpula) de todos los pocillos.
4. Llenamos la cúpula de los pocillos CIT , VP, GEL con la suspensión de bacterias.
5. Llenamos con parafina las cúpulas de los pocillos ADH, LDC, ODC, URE, H2S para obtener anaerobiosis.
7. Incubamos a 37ºC durante 18-24 horas
- RESULTADOS
Obtenemos lo siguiente:
TDA
- Añadir una gota de FeCl3 10 %.
- Positivo = color marrón oscuro.
- Añadir una gota del reactivo 1 (KOH al 40%) y una gota del reactivo 2 (C2 H5 OH).
- Positivo = color rosa fuerte o rojo en 5-10 minutos.
- Añadir una gota de reactivo de Kovacs.
- Positivo = anillo rosa-rojo
- Añadir una gota del reactivo (tetrafenilendiamina) recién preparado.
- Positivo = color azul que aparece inmediatamente
GLU
Prueba de reducción de nitratos a nitritos (NO2) y en nitrógeno (N2).- Añadir una gota de los reactivos NIT 1 y NIT 2 en el tubo GLU (de glucosa). Esperar 2 o 5 minutos. Una coloración roja indica una reacción positiva.
- Si no vira, se añade un poco de zinc (para reducir nitratos) y se observa si aparece color (quedaban nitratos) o permanece incoloro (no quedaban nitratos en el cultivo).
- RESULTADOS
- Si la reacción es negativa se pone 0.
- Si la reacción es positiva se pone: 1 si es el primer pocillo de un triplete, 2 si es el segundo, 4 si es el tercero.
- Se suman los valores de cada triplete y se obtiene un código de 7 cifras. Con este código se busca en la tabla de identificación la especie de que se trata.
- INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
Comparando los resultados con una imagen patrón, el código de nuestra bacteria es: 5044552 (E. Coli)
API 10 S
La batería de pruebas API 10 S es un sistema de identificación rápida para la identificación de bacterias de la familia Enterobacteriaceae y otras bacterias Gram (-). Básicamente consta de 11 test bioquímicos estandarizados y miniaturizados y una base de datos.
- INÓCULO BACTERIANO
Serratia
- MATERIAL
- PROCEDIMIENTO
1. Tomar una colonia bien aislada de cada microorganismo y resuspenderla homogéneamente en 5 mL de solución salina (1% de NaCl) o 5 mL de agua estéril (hasta obtener una suspensión con ligera turbidez).
2. Realizamos la cámara húmeda poniendo unas gotas de agua destilada en los alvéolos del soporte
3. Llenamos con la suspensión de bacterias los tubos (no la cúpula) de todos los pocillos.
Observar dicho proceso en el siguiente vídeo:
4. Llenamos la cúpula de los pocillos CIT, VP, GEL con la suspensión de bacterias.
5. Llenamos con parafina las cúpulas de los pocillos ADH, LDC, ODC, URE, H2S para obtener anaerobiosis.
6. Ponemos la tira en su propia cámara húmeda de incubación.
Serratia
- MATERIAL
- Pipeta Pasteur
- Agua destilada
- Parafina
- Asas de siembra estériles
- Gradilla para ampollas
- Suero salino
- Tijeras
1. Tomar una colonia bien aislada de cada microorganismo y resuspenderla homogéneamente en 5 mL de solución salina (1% de NaCl) o 5 mL de agua estéril (hasta obtener una suspensión con ligera turbidez).
2. Realizamos la cámara húmeda poniendo unas gotas de agua destilada en los alvéolos del soporte
3. Llenamos con la suspensión de bacterias los tubos (no la cúpula) de todos los pocillos.
Observar dicho proceso en el siguiente vídeo:
4. Llenamos la cúpula de los pocillos CIT, VP, GEL con la suspensión de bacterias.
5. Llenamos con parafina las cúpulas de los pocillos ADH, LDC, ODC, URE, H2S para obtener anaerobiosis.
6. Ponemos la tira en su propia cámara húmeda de incubación.
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