PRÁCTICA: ANTIBIOGRAMA (08/02/18)

ANTIBIOGRAMA (KIRBY-BAUER)

- INTRODUCCIÓN

Se denomina así al conjunto de técnicas, empleadas en el laboratorio, para
determinar “in vitro” el grado de sensibilidad de los microorganismos frente a la acción de distintos agentes antimicrobianos. Esto permite seleccionar el compuesto más adecuado para el tratamiento de una infección bacteriana.
Las pruebas más utilizadas se basan en el enfrentamiento “in vitro” del
microorganismo, aislado de una muestra biológica, con distintas concentraciones del
antimicrobiano.
Imagen relacionada
- FUNDAMENTO
Nosotros vamos a utilizar el método de difusión en agar o método de Kirby-Bauer.
Este método consiste en depositar discos de diferentes antibióticos, sobre la superficie de una placa Petri que contiene agar previamente inoculado con el microorganismo y tras un periodo de incubación de 18-24 horas, observar la zona o halo de inhibición que aparece rodeando al disco de antibiótico. El medio de cultivo más frecuentemente empleado es el de Müeller-Hinton, que permite el crecimiento de casi todas las bacterias. Cuando las bacterias lo requieran para su crecimiento, también se pueden utilizar medios como Agar sangre (para estreptocos) y Agar chocolate (para Haemophylus y Neisseria).
- INÓCULO BACTERIANO
 E. Coli








- MATERIAL
  • Asa de siembra
  • Hisopo de algodón
  • Suero fisiológico
  • Medio Müeller-Hinton
  • Discos con antibiótico
  • Regla
















- PROCEDIMIENTO

1. Se prepara un inoculo bacteriano, que tenga una turbidez equivalente al 0,5 de la escala de McFarland, para ello cogeremos unas 3-4 colonias y las resuspenderemos en 3-4 ml de suero.



2. Inocular la superficie de una placa de agar de Müeller-Hinton con el hisopo, pasándolo uniformemente por toda la superficie en tres direcciones. Por último pasar
el hisopo por el reborde de la placa de agar. Dejar secar 5 minutos.



3. Con unas pinzas estériles, colocar los discos de antibiótico (colistina, tobramicina, gentamicina, colimicina y amoxicilina) sobre la superficie del agar apretándolos suavemente.

         





4. Incubar la placa en posición invertida a 37° C durante 18-24 horas.

5. Medir los diámetros de las zonas de inhibición con una regla o un calibrador, utilizando luz reflejada sobre fondo negro.
                
                                           

- RESULTADOS



  • C - 3,1 cm = 31 mm (sensible)
  • NN - 2 cm = 20 mm (sensible)
  • CL - 1,2 cm = 12 mm (dudoso)
  • AMC = 2,5 cm = 25 mm (sensible)
  • GM = 2,2 cm = 22 mm (sensible)




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